ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان سایش سطحی کستهای ریخته شده با استون نوع III حاصل از قالبهای آلژیناتی ضد عفونی شده
مقدمه: ضدعفونی کردن قالبهای آلژیناتی به وسیله مواد ضدعفونیکننده به روش غوطه وری یا اسپری کردن به عنوان یک روش مؤثر برای کنترل عفونت شناخته شده است. هدف از این مطالعه بررسی میزان سایش سطحی کستهای ریخته شده با استون نوع III حاصل از قالبهای آلژیناتی ضد عفونی شده به دو روش اسپری کردن و غوطه وری میباشد.
مواد و روشها:چهار ماده ضدعفونی کننده رایج (هیپوکلریت سدیم 25/5%، گلوتارآلدئید 2%، میکروتن و دکونکس) انتخاب و نمونه ها به چهار گروه 40 تایی با دوزیرگروه 20 تایی تقسیم شدند و یک گروه شاهد 20 تایی جهت کنترل انتخاب گردید (مجموعاً 180 قالب). هر گروه با یک ماده ضدعفونی کننده و هر زیرگروه با یک روش (اسپری کردن یا غوطه وری) به مدت 8 دقیقه ضدعفونی شدند. قالبهای گروه شاهد ضدعفونی نشد. قالب ها با استون نوع III ریخته شدند. با استفاده از دستگاه ایجادکننده سایش سطحی، میزان سایش محاسبه شد. دادههای به دست آمده با استفاده از آمار توصیفی، تست ANOVA و LSD مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت.
یافتهها: میانگین میزان سایش سطحی در گروههای مختلف از لحاظ آماری معنیدار بود. اسپری کردن و غوطه وری با میکروتن و نیز اسپری کردن با هیپوکلریت سدیم25/5% کمترین میزان سایش و اسپری کردن و غوطه وریبا دکونکس بیشترین میزان سایش را داشت.
نتیجه گیری: در محدوده مطالعه ما از نظرکاهش ایجادسایش سطحی در کستهای حاصل از قالبهای ضدعفونی شده،استفاده از میکروتن به روش اسپری کردن و غوطه وری و نیز هیپوکلریت سدیم 25/5% به روش اسپری کردن توصیه میشود.
https://jmds.mums.ac.ir/article_964_0aae36564649085d266cfc863bf3da7e.pdf
2011-06-22
65
72
10.22038/jmds.2011.964
سایش
ضدعفونی کردن
آلژینات
استون
فهیمه
حامدی راد
fahimeh.hamedirad@gmail.com
1
استادیار گروه پروتزهای دندانی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز
LEAD_AUTHOR
طاهره
غفاری
2
استادیار گروه پروتزهای دندانی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز
AUTHOR
Shillinburg, Herbert T. Fundamentals of Fixed Prosthodontics. 3rd ed. St. Louis: Quintessence Pub 1997. P. 345-50.
1
Graig, RG, Powers JM. Restorative Dental Materials. 11th ed. St. Louis: Mosby Co; 2002. P. 339.
2
Cohen S, Burns R. Pathways of the Pulp. 8th ed. St. Louis: Mosby Co; 2000. P. 169-70.
3
Peutzfeldt A, Asmussen E. Effect of disinfecting solutions on surface texture of alginate and elastomeric impressions. Scand J Dent Res 1990; 98(1): 74-81.
4
Tan HK, Wolfaardt JF, Hooper PM, Busby B. Effects of disinfecting irreversible hydrocolloid impressions on the resultant gypsum casts: Part 1- Surface quality. J Prosthet Dent 1993; 69(3): 250-7.
5
Boden J, Likemen P, Clark R. Some effects of disinfecting solutions on the properties of alginate impression material and dental stone. Eur J Prosthodont Restor Dent 2001; 9(3): 131-5.
6
Hussain SM, Tredwin CJ, Nesbit M, Moles DR. The effect of disinfection on irreversible hydrocolloid and type III gypsum casts. Eur J Prosthodont Restor Dent 2006; 14(2): 50-4.
7
Bock JJ, Fuhrmann RA, Setz J. The influence of different disinfectants on primary impression materials. Quintessence Int 2008; 39(3): 93-8.
8
Philips R. Skinner Science of Dental Material. 9th ed. Philadelphia: W.B. Saunders Co; 1991. P. 140-7.
9
AL-Omari WM, Jones JC, Wood DJ. The effect of disinfecting alginate and addition cured silicone rubber impression materials on the physical properties of impressions and resultant casts. Eur J Prosthodont Restor Dent 1998; 6(3): 103-10.
10
Matyas J, Dao N, Caputo AA, Lucatorto FM. Effects of disinfectants on dimensional accuracy of impression materials. J Prosthet Dent 1990; 64(1): 25-31.
11
Taylor RL, Wright PS, Maryan C. Disinfection procedures: Their effect on the dimensional accuracy and surface quality of irreversible hydrocolloid impression materials and gypsum casts. Dent Mater 2002; 18(2): 103-10.
12
Kern M, Rathmer RM, Strub JR. Three dimensional investigation of the accuracy of impression materials after disinfection. J Prosthet Dent 1993; 70(5): 449-56.
13
Rueggeberg FA, Beall FE, Kelly MT, Schuster GS. Sodium hypochlorite disinfection of irreversible hydrocolloid impression material. J Prosthet Dent 1992; 67(5): 628-31.
14
Sofou A, Larsen T, Owall B, Fiehn NE. In vitro study of transmission of bacteria from contaminated metal models to stone models via impressions. Clin Oral Investig 2002; 6(3): 166-70.
15
Samaranayake LP, Hunjan M, Jennings KJ. Carriage of oral flora on irreversible hydrocolloid and elastomeric impression materials. J Prosthet Dent 1991; 65(2): 244-9.
16
Flanagan DA, Palenik CJ, Setcos JC, Miller CH. Antimicrobial activities of dental impression materials. Dent Mater 1998; 14(6): 399-404.
17
Jones ML, Newcombe RG, Bellis H, Bottomley J. The dimensional stability of self disinfecting alginate impressions compared to various impression regimes. Angle Orthod 1990; 60(2): 123-8.
18
Ramer M, Gerhardt D, Mc Nally K. Accuracy of irreversible hydrocolloid impression material mixed with disinfectant solutions. J Prosthodont 1993; 2(3): 156-8.
19
Blair FM, Wassell RW. A survey of the methods of disinfection of dental impressions used in dental hospitals in the United Kingdom. Br Dent J 1996; 180(10): 369-75.
20
Dario M, Antonio R. The effect of immersion disinfection procedures on dimensional stability of two elastomeric impression materials. J Oral Sci 2008; 50: 441-6.
21
Wilson S, Wilson H. The effect of chlorinated disinfecting solutions on alginate impressions. Restorative Dent 1987; 3(4): 86-9.
22
Abour MA, O'Neilly PJ, Setchell DJ, Pearson GJ. Physical properties of casts prepared from disinfected alginate. Eur J Prosthodont Restor Dent 1996; 4(2): 87-91.
23
Abdelaziz KM, Combe EC, Hodges JS. The effect of disinfectants on the properties of dental gypsum, part 2: Surface properties. J Prosthodont 2002; 11(4): 234-40.
24
Ahmad S, Tredwin CJ, Nesbit M, Moles DR. Effect of immersion disinfection with Perform ID on alginate ,an alginate alternative , an addition cured silicone and resultant type III gypsum casts. Br Dent J 2007; 202(1):
25
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه گیرنده دیجیتال CMOS با فیلم در تشخیص تحلیل خارجی ریشه: مطالعه آزمایشگاهی
مقدمه:تحلیلریشهیکیازمعضلاتتشخیصیدردرمانهایاندودنتیکمیباشد. باتوجهبه این کهموفقیت درمان به تشخیص زودهنگام این پاتولوژی وابسته است، لذا به کارگیری ابزارهای مختلف تشخیصی اعم از تصاویر رادیوگرافی بر پایه فیلم و یا تصاویر دیجیتال و در نهایت تکنیکهای پیشرفته تشخیصی حائز اهمیت است. لذا در این مطالعه گیرنده تصویری دیجیتال Complementary Metal Oxide Semiconductors (CMOS) و فیلم در تشخیص تحلیل خارجی ریشه مورد مقایسه قرار گرفت.
مواد و روشها: در این مطالعه آزمایشگاهی، در گروه اول بر روی ریشه 12 دندان پره مولر سالم که جهت درمان ارتودنسی کشیده شده بودند، پنجرهای به ابعاد mm2×2 در یکی از نواحی باکال، لینگوال ویا پروگزیمال در دو مقطع سرویکالو میانی ایجاد شد و مابقی سطح دندان با لاک پوشانده شد. تحلیل ریشه در دو مرحله با اسید شبیهسازی شد.با دو گیرندهفیلمو سنسور CMOSدر سه زاویه بدون شیفت و با شیفت پانزده درجه مزیالی و دیستالیتصاویر رادیوگرافی تهیه شدند. در گروه دوم بر روی 12دندان پره مولر دیگر، حفرههای فرزی در دومرحله با اندازههای متفاوت تهیه نموده و بقیه مراحل شبیه گروه اول تکرار شد. تصاویر تهیه شده توسط یک نفر اندودونتیست و یک نفر رادیولوژیست مجرب از نظر برای وجود یا عدم وجود تحلیل ریشه مورد بررسی قرار گرفتند.دادهها با آزمون مجذور کای آنالیز شد.
یافتهها:در مجموع تشخیص صحیح تحلیل اسیدی در تکنیک دیجیتال نسبت به متد کانونشنال (فیلم) اختلاف آماری قابل توجهی را نشان داد. در حالیکه در تحلیل فرزی این اختلاف قابل توجه نبود.
نتیجه گیری: براساس نتایج اینتحقیق سنسورهای دیجیتال در تشخیص تحلیل ریشه کمک کنندهتر از تصاویر کانونشنال بوده ومتغیرهایی نظیر اندازه و شکل حفره، موقعیت و سطوح تحلیل در قدرت تشخیص مشاهدهگرها موثر هستند.
https://jmds.mums.ac.ir/article_965_9c649f43a237dfff0fb5ca2f67cf8ee4.pdf
2011-06-22
73
84
10.22038/jmds.2011.965
تحلیل ریشه
پرتونگاری دندان
پرتونگاری دیجیتال
زهرا
دلیلی
zahradalili@yahoo.com
1
دانشیار گروه رادیولوژی دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان
LEAD_AUTHOR
مهران
طارمسری
m.taramsari@yahoo.com
2
استادیار گروه اندودانتیکس، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان
AUTHOR
سیده طاهره
محتوی پور
s.t_mohtavipour@yahoo.com
3
استادیار گروه رادیولوژی دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گیلان
AUTHOR
ایمان
اوژند
4
دندانپزشک
AUTHOR
Ericson S, Bjerklin K, Falahat B. Does the canine dental follicle cause resorption of permanent incisor roots? A computed tomographic study of erupting maxillary canines. Angle Orthod 2002; 72(2): 95-104.
1
Fuss Z, Tsesis I, Lin S. Root resorption-diagnosis, classification and treatment choices based on stimulation factors. Dent Traumatol 2003; 19(4): 175-82.
2
Laux M, Abbott PV, Pajarola G, Nair PN. Apical inflammatory root resorption: A correlative radiographic and histological assessment. Int Endod J 2000; 33(6): 483-93.
3
Levander E, Bajka R, Malmgren O. Early radiographic diagnosis of apical root resorption during orthodontic treatment: A study of maxillary incisors. Eur J Orthod 1998; 20(1): 57-63.
4
Borg E, Grondahl HG. On the dynamic range of different X-ray photon detectors in intra-oral radiography. A comparison of image quality in film, charge-coupled device and storage phosphor systems. Dentomaxillofac Radiol 1996; 25(2): 82-8.
5
Westphalen VP, Gomes de Moraes I, Westphalen FH, Martins WD, Souza PH. Conventional and digital radiographic methods in the detection of simulated external root resorptions: A comparative study. Dentomaxillofac Radiol 2004; 33(4): 233-5.
6
Borg E, Källqvist A, Gröndahl K, Gröndahl HG. Film and digital radiography for detection of simulated root resorption cavities. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 1998; 86(1): 110-4.
7
Hintze H, Wenzel A, Andreasen FM, Swerin I. Digital subtraction radiography for assessment of simulated root resorption cavities. Performance of conventional and reverse contrast modes. Endod Dent Traumatol 1992; 8(4): 149-54.
8
Nance RS, Tyndall D, Levin LG, Trope M. Diagnosis of external root resorption using TACT (tuned-aperture computed tomography). Endod Dent Traumatol 2000; 16(1): 24-8.
9
da Silveira HL, Silveira HE, Liedke GS, Lermen CA, Dos Santos RB, de Figueiredo JA. Diagnostic ability of computed tomography to evaluate external root resorption in vitro. Dentomaxillofac Radiol 2007; 36(7): 393-6.
10
Kamburoglu K, Tsesis I, Kfir A, Kaffe I. Diagnosis of artificially induced external root resorption using conventional intraoral film radiography, CCD, and PSP: An ex vivo study. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2008; 106(6): 885-91.
11
Kang BC, Farman AG, Scarfe WC, Goldsmith LJ. Mechanical defects in dental enamel vs. natural dental caries: Observer differentiation using Ektaspeed plus film. Caries Res 1996; 30(2): 156-62.
12
Chapnick L. External root resorption: An experimental radiographic evaluation. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 1989; 67(5): 578-82.
13
Goldberg F, De Silvio A, Dreyer C. Radiographic assessment of simulated external root resorption cavities in maxillary incisors. Endod Dent Traumatol 1998; 14(3): 133-6.
14
ORIGINAL_ARTICLE
آماده سازی سطحی ایمپلنت دندانی تیتانیم به روش شیمیایی با محلول اسیدی سهتایی
مقدمه: هدف از این پژوهش آماده سازی سطحی تیتانیم با استفاده از محلول اسیدی سهتایی و بررسی تأثیر پارامتر زمان بر ایجاد زبری و تغییرات مورفولوژی در سطح این ایمپلنت و ارزیابی این موضوع بر رفتار بیولوژیکی تیتانیم است. مواد و روش ها: در این مطالعه آزمایشگاهی، مورفولوژی و زیست سازگاری سطوح تیتانیم پولیش شده و اصلاح شیمیایی شده با محلول اسیدی، 80% اسید کلریدریک- 10% اسید فلوئوریدریک- 10% اسید فسفریک تحت شرایط تغییر زمان عملیات بررسی شد. تعداد 54 نمونه جهت اصلاح شیمیایی سطح و ارزیابی های بیولوژیکی و همچنین 9 نمونه به عنوان شاهد استفاده گردید. برای بررسی مورفولوژی، توپوگرافی و زبری سطوح، آنالیزهای میکروسکوپ الکترونی و میکروسکوپ نیروی اتمی بهعمل آمد. از سلولهای استخوانساز (MG-63) استفاده شد. داده ها با استفاده از تست های آماری t-test و آنالیز واریانس یک طرفه، آنالیز گردید. یافتهها: نتایج نشان داد که تغییر زمان عملیات شیمیایی تأثیر قابل ملاحظهای بر مورفولوژی و زبری سطح تیتانیم داشت. بهعلاوه، با انجام عملیات شیمیایی توسط محلول اسیدی سهتایی و با ترکیب فوق الذکر مشاهده شد که افزایش زمان تا 120 ثانیه باعث افزایش زبری سطح گردید. اما در زمانهای بالاتر این روند منظم نبود، بهطوریکه در مدت زمان 210 ثانیه حداکثر مقدار R.M.S و Ra ایجاد شد. همچنین نتایج ارزیابی بیولوژیکی نشان داد که مورفولوژی و زبری سطح بر زیست سازگاری و قابلیت همبندی با استخوان تیتانیم نقش مهمی دارد، لذا، بیشترین مقدار رشد و تکثیر و چسبندگی سلول برای زمان 210 ثانیه بدست آمد. نتیجه گیری: محلول اسیدی سهتایی با ترکیب ذکر شده، روشی آسان و در عین حال کمهزینه جهت زیست فعال نمودن سطح ایمپلنت تیتانیم با قابلیت پیوند بافت در کاربردهای زیستی پزشکی است.
https://jmds.mums.ac.ir/article_966_11be96323ca5851fcba51869da3a641d.pdf
2011-06-22
85
98
10.22038/jmds.2011.966
بیومواد
ایمپلنت تیتانیم
زبری سطح
زیست سازگاری
امیر
زارعی دوست
1
استادیار گروه مواد دانشکده مهندسی مواد-صنایع دانشگاه سمنان
AUTHOR
مردعلی
یوسف پور
mardaliyousefpour@yahoo.com
2
استادیار گروه مواد دانشکده مهندسی مواد-صنایع دانشگاه سمنان
LEAD_AUTHOR
بهروز
قاسمی
3
استادیار گروه مواد دانشکده مهندسی مواد-صنایع دانشگاه سمنان
AUTHOR
Yousefpour M, Afshar A, Chen J, Xingdong Z. Bioactive layer formation on alkaline-acid treated titanium in simulated body fluid. Materials & Design 2007; 28: 2154-9.
1
Zhu X, Chen J, Scheideler L, Reichl R, Geis-Gerstorfer J. Effects of topography and composition of titanium surface oxides on osteoblast responses. Biomaterials 2004; 25(18): 4087-103.
2
Jayaraman M, Meyer U, Buhner M, Joos U, Wiesmann HP. Influence of titanium surfaces on attachment of osteoblast-like cells in vitro. Biomaterials 2004; 25(4): 625-31.
3
Juodzbalys G, Sapragoniene M, Wennerberg A. New Acid Etched Titanium Dental Implant Surface. Stomatologija Baltic Dental and Maxillofacial Journal 2003; 5: 101-5.
4
Conforto E, Caillard D, Aronsson BO, Descouts P. Electron Microscopy on Titanium Implants for Bone Replacement After “SLA” Surface Treatment. European Cells and Materials 2002; 3: 9-10.
5
Le Guehennec L, Soueidan A, Layrolle P, Amouriq Y. Surface treatments of titanium dental implants for rapid osseointegration. Dent Mater 2007; 23(7): 844-54.
6
Liu X, Poon Ray WY, Kwok Sunny CH, K. Paul C, Chuanxian D. Plasma surface modification of titanium for hard tissue replacements. Surface & Coatings Technology 2004; 186(1-2): 227-33.
7
Refai AK. The Effect of titanium surface topography on macrophage behaviour in vitro [Doctorate Thesis]. Canada. The University of British Columbia; 2009.
8
Kim H, Choi SH, Ryu JJ, Koh SY, Park JH, Lee IS. The biocompatibility of SLA-treated titanium implants. Biomed Mater 2008; 3(2): 025011.
9
Cooper LF, Zhou Y, Takebe J, Guo J, Abron A, Holmen A, et al. Fluoride modification effects on osteoblast behavior and bone formation at TiO2 grit-blasted c.p. titanium endosseous implants. Biomaterials 2006; 27(6): 926-36.
10
Le Guehennec L, Lopez-Heredia MA, Enkel B, Weiss P, Amouriq Y, Layrolle P. Osteoblastic cell behaviour on different titanium implant surfaces. Acta Biomater 2008; 4(3): 535-43.
11
Takeuchi M, Abe Y, Yoshida Y, Nakayama Y, Okazaki M, Akagawa Y. Acid pretreatment of titanium implants. Biomaterials 2003; 24(10): 1821-7.
12
Ban S, Iwaya Y, Kono H, Sato H. Surface modification of titanium by etching in concentrated sulfuric acid. Dental Mater 2006; 22(12): 1115-20.
13
Mendonca G, Mendonca DB, Aragao FJ, Cooper LF. Advancing dental implant surface technology-From micron to nanotopography. Biomaterials 2008; 29(28): 3822-35.
14
Rausch-fan X, Qu Z, Wieland M, Matejka M, Schedle A. Differentiation and cytokine synthesis of human alveolar osteoblasts compared to osteoblast-like cells (MG63) in response to titanium surfaces. Dent Mater 2008; 24(1): 102-10.
15
Ellingsen JE, Johansson CB, Wennerberg A, Holman A. Improved retention and bone-to-implant contact with fluoride-modified titanium implants. Int J Oral Maxillofac Implants 2004; 19(5): 659-66.
16
Mohsin HM, Gao W. How is the Surface Treatments Influence on the Roughness of Biocompatibility? Trends Biomater Artif Organs 2008; 22(3): 140-53.
17
Liu X, Chu PK, Ding C. Surface modification of titanium, titanium alloys, and related materials for biomedical applications. Materials Science and Engineering 2004; 47: 49-121.
18
Muller FA, Bottino MC, Muller L, Henriques VA, Lohbauer U, Bressiani AH, et al. In vitro apatite formation on chemically treated (P/M) Ti–13Nb–13Zr. Dental Mater 2008; 24(1): 50-6.
19
Wang XX, Hayakawa S, Tsuru K, Osaka A. Bioactive titania gel layers formed by chemical treatment of Ti substrate with a H2O2/HCl solution. Biomaterials 2002; 23(5): 1353-7.
20
Sargolzaie N, Ghanbary H, Mohammadzadeh Rezaee Y. The effect of two types of implant surface coating on bone and surrounding tissues of prosthesis with implant supporting. J Mash Dent Sch 2008, 32(3): 207-12. (Persian)
21
Takemoto M, Fujibayashi S, Neo M, Suzuki J, Matsushita T, Kokubo T, et al. Osteoinductive porous titanium implants: Effect of sodium removal by dilute HCl treatment. Biomaterials 2006; 27(13): 2682-91.
22
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی هیستوپاتولوژیک فضای رادیولوسنت نرمال اطراف تاج دندان عقل نهفته
مقدمه: فولیکول اطراف مولر سوم نهفته میتواند به ضایعات پاتولوژیک تبدیل شود. فقدان رادیولوسنسی غیرعادی، حضور فولیکول نرمال را نشان میدهد. هدف از مطالعه حاضر، ارزیابی هیستوپاتولوژیک رادیولوسنسیهای نرمال اطراف تاجی دندانهای عقل نهفته بود.
مواد و روشها: فضای فولیکولی 104 دندان عقل نهفته با فضای فولیکولی نرمال (کمتر از 5/2 میلی متر) در رادیوگرافی پانورامیک اندازهگیری شد. تحت بیحسی موضعی، فولیکول و دندان همراه، توسط جراحی خارج شد و بعد از طی مراحل معمول، از نظر هیستوپاتولوژیکی مورد بررسی قرار گرفت. داده ها بوسیله آزمون دقیق فیشر، کای دو و رگرسیون لوجستیک تجزیه و تحلیل شد (05/0a=).
یافتهها: 38 مورد (5/36%) فولیکولها از بیماران مذکر و 66 مورد (5/63%)، از بیماران مونث جمعآوری شد. 92 فولیکول (5/88%) مربوط به مندیبل و 12 فولیکول (5/11%) مربوط به ماگزیلا بود. 43 مورد (3/41%) تغییرات کیستیک مشابه کیست دنتیژروس را نشان دادند. تغییرات کیستیک در فولیکول دندانی به طور معنیداری، در بیماران بالای 20 سال، بیشتر بود (0001/0P<). رابطه معنیداری بین بروز تغییرات کیستیک با جنسیت بیماران یافت نشد (05/0P>). دندان عقل نهفته با ضخامت رادیولوسنسی اطراف تاجی بیش از 5/1 میلیمتر در 3/63% موارد تغییرات کیستیک را نشان میداد.
نتیجه گیری: این مطالعه، ایده فراگیری که بیان میدارد ریسک تغییرات کیستیک در فولیکول دندانی با بالا رفتن سن افزایش مییابد، را تأیید میکند. با توجه به بروز بالای تغییرات کیستیک در رادیولوسنسیهای اطراف تاجی دندان مولر سوم نهفته، این مطالعه از برداشتن پروفیلاکتیک دندان عقل نهفته حمایت میکند.
https://jmds.mums.ac.ir/article_967_7c5c77162e8467777326ee151fbea3c0.pdf
2011-06-22
99
106
10.22038/jmds.2011.967
دندان نهفته
کیست دنتیژروس
فولیکول دندانی
رادیوگرافی پانورامیک
مریم
سیدمجیدی
ms_majidi@yahoo.com
1
استادیار آسیب شناسی دهان، فک و صورت، مرکز تحقیقات مواد دندانی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بابل
LEAD_AUTHOR
سینا
حقانی فر
dr.haghani@yahoo.com
2
استادیار گروه رادیولوژی دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بابل
AUTHOR
رامین
فروغی
3
استادیار گروه جراحی دهان، فک و صورت دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بابل
AUTHOR
محمود
حاجی احمدی
4
مربی گروه پزشکی اجتماعی - دانشگاه علوم پزشکی بابل
AUTHOR
ندا
محمدپور
5
دندانپزشک
AUTHOR
Neville BW, Damm D, Allen CM, Bouqout JE. Oral and Maxillofacial Pathology. 3rd ed. St. Louis: W.B. Saunders Co; 2009. P. 590-643.
1
Ahlqwist M, Gröndahl HG. Prevalence of impacted teeth and associated pathology in middle-aged and older Swedish women. Community Dent Oral Epidemiol 1991; 19(2): 116-9.
2
Miloro M, Ghali GE, Larsen PE, Waite P. A textbook of Oral and Maxillofacial Surgery. 5th ed. Hamilton: B.C. Decker Inc; 2008. P. 194-6.
3
Saghafi SH, Haraji A, Zare Mahmodabadi R, Farzanegan F. Evaluation of histopathologic changes in impacted third molar follicles in Mashhad dental school in 2005. J Mash Dent Sch 2007; 31(3): 171-6. (Persian)
4
Craig RM, Wescott WB, Correll RW. A well-defined coronal radiolucent area involving an impacted third molar. J Am Dent Assoc 1984; 109(4): 612-3.
5
White SC, Pharoah MJ. Oral Radiology: Principles and Interpretation. 5th ed. St. Louis: Mosby Co; 2004. P. 388, 390, 419.
6
Wood NK, Goaz PW. Differential Diagnosis of Oral and Maxillofacial lesions. 5th ed. St. Louis: Mosby Co; 1997. P. 282-3.
7
Daley TD, Wysocki GP. The small dentigerous cyst: A diagnostic dilemma. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 1995; 79(1): 77-81.
8
Adelsperger J, Campbell JH, Coates DB, Summerlin DJ, Tomich CE. Early soft tissue pathosis associated with impacted third molars without pericoronal radiolucency. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2000; 89(4): 402-6.
9
Saravana GH, Subhashraj K. Cystic changes in dental follicle associated with radiographically normal impacted mandibular third molar. Br J Oral Maxillofac Surg 2008; 46(7): 552-3.
10
Baykul T, Saglam AA, Aydin U, Başak K. Incidence of cystic changes in radiographically normal impacted lower third molar follicles. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2005; 99(5): 542-5.
11
Rakprasitkul S. Pathologic changes in the pericoronal tissues of unerupted third molars. Quintessence Int 2001; 32(8): 633-8.
12
Mesgarzadeh AH, Esmailzadeh H, Abdolrahimi M, Shahamfar M. Pathosis associated with radiographically normal follicular tissues in third molar impactions: A clinicopathological study. Indian J Dent Res 2008; 19(3):
13
Glosser JW, Campbell JH. Pathologic change in soft tissues associated with radiographically 'normal' third molar impactions. Br J Oral Maxillofac Surg 1999; 37(4): 259-60.
14
Polat HB, Ozan F, Kara I, Ozdemir H, Ay S. Prevalence of commonly found pathoses associated with mandibular impacted third molars based on panoramic radiographs in Turkish population. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2008; 105(6): 41-7.
15
Fukuta Y, Totsuka M, Takeda Y, Yamamoto H. Pathological study of the hyperplastic dental follicle. J Nihon Univ Sch Dent 1991; 33(3): 166-73.
16
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات ضدباکتریایی دهانشویههای گیاهی پرسیکا و ماتریکا بر باکتریهای شایع دهان: یک مطالعه آزمایشگاهی
مقدمه: دهانشویههای گیاهی به واسطه فعالیت ضدمیکروبی و کنترل پلاک دندانی موجب بهبود بهداشت دهان میشوند. هدف از این مطالعه آزمایشگاهی، مقایسه اثرات ضدباکتریائی دهانشویههای گیاهی پرسیکا و ماتریکا با کلرهگزیدین 2/0 درصد بود.
مواد و روشها: از روش انتشار دیسک (Disc diffusion) برای اندازهگیری هاله عدم رشد دهانشویههای مورد مطالعه بر استرپتوکوکوس موتانس، استرپتوکوکوس سانگویس، استرپتوکوکوس سالیواریس، استرپتوکوکوس سوبرینوس، کلبسیلا نمونیه، اشریشیا کلی، سودوموناس آئروژینوزا و ایکنلا کورودنس استفاده گردید. دیسکهای کاغذی حاوی دهانشویهها بر روی محیط کشت آغشته به میکروب قرار گرفتند؛ از دیسکهای بلانک به عنوان کنترل استفاده شد. از هر دهانشویه، سه نمونه و از هر نمونه سه بار کشت تهیه شد که با احتساب دیسکهای کنترل، در مجموع، 240 کشت تهیه گردید. پس از 18 ساعت نگهداری در انکوباتور، قطر هاله عدم رشد بر حسب میلیمتر اندازهگیری شد. دادهها با استفاده از نرمافزار SPSS با ویرایش 16 و آزمونهای کروسکال-والیس و من-ویتنی تجزیه و تحلیل شدند.
یافتهها: دهانشویه کلرهگزیدین 2/0 درصد به طور معنیداری نسبت به دهانشویههای گیاهی پرسیکا و ماتریکا قطر هاله عدم رشد بزرگتری ایجاد نمود. پرسیکا به جز بر کلبسیلا نمونیه نتوانست مانع رشد باکتریهای مورد مطالعه شود. همچنین تفاوت آماری معنیداری بین سه نمونه از هر دهانشویه و سه کشت از هر دهانشویه وجود نداشت.
نتیجهگیری: بر اساس یافتههای این مطالعه، دهانشویههای گیاهی دارای قدرت کمتری نسبت به کلرهگزیدین در ممانعت از رشد باکتریهای دهان میباشند. ولی مطالعات بیشتری برای اثبات یافتههای حاضر نیاز است.
https://jmds.mums.ac.ir/article_968_f40c1b5ff55c2419a4f44144f00cf261.pdf
2011-06-22
107
114
10.22038/jmds.2011.968
دهانشویه گیاهی
پرسیکا
ماتریکا
کلرهگزیدین
میکروبهای دهان
فعالیت ضدباکتریائی
مصطفی
صادقی
mostafasadeghi@yahoo.com
1
دانشیار گروه دندانپزشکی ترمیمی و زیبایی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
LEAD_AUTHOR
رضا
بهرامآبادی
2
کارشناس گروه میکروبیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
AUTHOR
سپیده
آثار
3
دانشجوی دندانپزشکی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
AUTHOR
Mozaffari B, Mansouri Sh, Rajabalian S, Alimardani A, Mohamadi M. In vitro study between anti-bacterial and cytotoxic effects of Chlorhexidine and Persica mouthrinses. Journal of Dental School Shahid Beheshti University of Medical Sciences 2005; 23(3): 494-509. (Persian)
1
Rajabalian S, Mohammadi M, Mozaffari B. Cytotoxicity evaluation of Persica mouthwash on cultured human and mouse cell lines in the presence and absence of fetal calf serum. Indian J Dent Res 2009; 20(2): 169-73.
2
Noumi E, Snoussi M, Hajlaoui H, Valentin E, Bakhrouf A. Antifungal properties of Salvadora persica and Juglans regia L. extracts against oral Candida strains. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2010; 29(1): 81-8.
3
Paknejad M, Jafarzadeh TS, Shamloo AM. Comparison of the efficacy of Matrica and %0.2 Chlorhexidine mouthwashes in patients with chronic periodontitis. J Islamic Dent Assoc 2006; 18(3): 92-7. (Persian)
4
Abd El Rahman HF, Skaug N, Francis GW. In vitro antimicrobial effects of crude miswak extracts on oral pathogens. Saudi Dent J 2002; 14(1): 26-32.
5
Haghighati F, Jafari S, Beitollahi J. Comparison of antimicrobial effects of ten Herbal extracts with chlorhexidine on three different oral pathogens: An in vitro study. Hakim Res J 2003; 6(3): 71-6. (Persian)
6
Haffajee AD, Yaskell T, Socransky SS. Antimicrobial effectiveness of an herbal mouthrinse compared with an essential oil and a chlorhexidine mouthrinse. J Am Dent Assoc 2008; 139(5): 606-11.
7
Fallahzadeh H, Moeintaghavi A, Foruzanmehr M. Clinical comparison of Persica and Chlorhexidine mouthrinses using Meta-analysis technique. J Islamic Dent Assoc 2006; 18(1): 62-72. (Persian)
8
Santos A. Evidence-based control of plaque and gingivitis. J Clin Periodontol 2003; 30(5): 13-6.
9
Almas K. The antimicrobial effects of extracts of Azadirachta indica (Neem) and Salvadora persica (Arak) chewing sticks. Indian J Dent Res 1999; 10(1): 23-6.
10
Almas K, Skaug N, Ahmad I. An in vitro antimicrobial comparison of miswak extract with commercially available non-alcohol mouthrinses. Int J Dent Hyg 2005; 3(1): 18-24.
11
Khalessi AM, Pack AR, Thomson WM, Tompkins GR. An in vivo study of the plaque control efficacy of Persica: A commercially available herbal mouthwash containing extracts of Salvadora persica. Int Dent J 2004; 54(5): 279-83.
12
Hammad M, Sallal AK. Inhibition of Streptococcus mutans adhesion to buccal epithelial cells by an aqueous extract of thymus vularis. Int J Dent Hyg 2007; 5(4): 232-5.
13
Sofrata AH, Claesson RL, Lingstrom PK, Gustafsson AK. Strong antibacterial effect of miswak against oral microorganisms associated with periodontitis and caries. J Periodontol 2008; 79(8): 1474-9.
14
Sofrata A, Lingstrom P, Baljoon M, Gustafsson A. The effect of miswak extract on plaque pH. An in vivo study. Caries Res 2007; 41(6): 451-4.
15
Matricaria chamomilla. Available at: http://www.barijessence.com/?culture=en-US&page=article&itemid=76. Accessed January 19, 2010.
16
Mazokopakis EE, Vrentzos GE, Papadakis JA. Wild chamomile (matrica recutita l) mouthwashes in methotrexate-induced oral mucositis. Phytomedicine 2005; 12(1-2): 25-7.
17
Ataei Z, Abdelahi H, Naderipour S, Mohamadi S. Comparison of antifungal and antibacterial effects of Persica, Matrica and Iralwex with Chlorhexidine mouthwashes (An in vitro study). Journal of Dental School Shahid Beheshti University of Medical Sciences 2007; 25(1): 58-65. (Persian)
18
Hogg S. Essential Microbiology. 1st ed. London: Wiley; 2005. P. 367-8.
19
Mcpherson RA, Pincus MR. Henry's clinical diagnosis and management by laboratory methods. 21st ed. Philadelphia: W.B. Saunders Co; 2007. P. 1049-50.
20
Jajarm HH, Jahanbin A, Mokhber N, Gooyandeh S, Mansourian A, Beitollahi JM. Effects of persica mouthwash on oral microbiota of cleft lip and palate patients during fixed orthodontic treatment. J Applied Sci 2009; 9(8): 1593-6.
21
Almas K, Al-Zeid Z. The immediate antimicrobial effect of a toothbrush and miswak on cariogenic bacteria: A clinical study. J Contemp Dent Pract 2004; 5(1): 105-14.
22
Friedlander AH, Marshall CE. Pathogenesis and prevention of native valve infective endocarditis in elderly dental patients. Drugs Aging 1994; 4(4): 325-30.
23
Salehi P, Kohanteb G, Momeni Danaei Sh, Vahedi R. Comparison of the antibacterial effects of Persica and Matrica, two herbal mouthwashes with Chlorhexidine mouthwashes. Shiraz University of Medical Sciences Journal of Dentistry 2005; 6(1,2): 63-72.
24
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه تاثیر دو دهانشویه حاوی فلوراید بر میزان استرپتوکوکوس موتانس بزاق
مقدمه: استرپتوکوکوس موتانس مهمترین میکروارگانیسم پوسیدگی زا بوده و در آغاز پوسیدگی نقش اصلی را دارا میباشد. دهانشویههای حاوی فلوراید به دلیل خواص ضدمیکروبی یون فلوراید، میتوانند تاثیر بسزایی در کاهش این میکروارگانیسم داشته باشند. دو دهانشویه حاوی فلوراید رایج در بازار، دهانشویه Oral-B و دهانشویه ایرشا میباشد. هدف از این مطالعه مقایسه تاثیر این دو دهانشویه بر میزان استرپتوکوکوس موتانس بزاق بوده است.
مواد و روشها: مطالعه به طریق تجربی- مداخلهای انجام شد. بدین صورت که 60 دانش آموز از یک دبیرستان شبانه روزی دخترانه به طور تصادفی به 2 گروه 30 نفره تقسیم شدند. به یک گروه دهانشویه Oral-B و به گروه دیگر دهانشویه ایرشا داده شد و از آنها خواسته شد که دهانشویهها را به مدت 4 هفته روزی 2 بار استفاده نمایند. قبل و بعد از مصرف دهانشویه از همه شرکت کنندگان نمونه گیری بزاق بعمل آمد و برای کشت میکروبی به آزمایشگاه فرستاده شد. در نهایت دادهها با استفاده از آزمون t مستقل و زوجی و با در نظر گرفتن سطح معنی داری 5% مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفت.
یافتهها: استفاده از هر دو نوع دهانشویه به طور معنیداری باعث کاهش میزان استرپتوکوکوس موتانس بزاق گردید (برای دهانشویه ایرشا 001/0P< و برای دهانشویه Oral-B 001/0P<). به علاوه مشخص شد که دهانشویه Oral-B به طور معنیداری تاثیر بیشتری (حدود 2 برابر) از دهانشویه ایرشا دارد (001/0P<).
نتیجه گیری: این مطالعه نشان داد که هردو دهانشویه حاوی فلوراید، Oral-B و ایرشا، در کاهش میزان استرپتوکوکوس موتانس بزاق موثر هستند. همچنین مشخص گردید که تاثیر دهانشویه Oral-B حدود 2 برابر بیشتر از دهانشویه ایرشا است.
https://jmds.mums.ac.ir/article_969_9c5bef2339f83800c4c69cf6f7ff3672.pdf
2011-06-22
115
122
10.22038/jmds.2011.969
استرپتوکوکوس موتانس
دهانشویه حاوی فلوراید
Oral-B
ایرشا
بزاق
مریم
کرمی
z.jafary@khuisf.ac.ir
1
استادیار گروه دندانپزشکی کودکان، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد خوراسگان
AUTHOR
رومینا
مظاهری
romina.mazaheri@gmail.com
2
استادیار گروه دندانپزشکی کودکان، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد خوراسگان
LEAD_AUTHOR
منوچهر
مصری پور
3
استاد بیوشیمی کلینیکال، دانشکده علوم پایه پزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد خوراسگان
AUTHOR
Dean JA, Avery DR, Mc Donald RE. Dentistry for the Child and Adolescent. 9th ed. London: Mosby Co; 2011. P. 177-204.
1
Pinkham JR, Casamassimo PS, Fields HW, Mc Tigue DJ, Nowak AJ. Pediatric Dentistry. 4th ed. London: Mosby Co; 2005. P. 199-203, 225-30.
2
Azizi A, Fatholahzadeh B, Maleknejad P, Shamspour A. Evaluation of effects of Irsha antiseptic mouthwash on pathogen streptococcus and oral normal microflora. Journal of Isfahan Dental School 2009; 5(1): 24-9. (Persian)
3
Moran J, Addy M, Newcombe R. A 4-day plaque regrowth study comparing an essential oil mouthrinse with a triclosan mouthrinse. J Clin Periodontol 1997; 24(9): 636-9.
4
DePaola LG, Minah GE, Overholser CD, Meiller TF, Charles CH, Harper DS, et al. Effect of an antiseptic mouthrinse on salivary microbiota.Am J Dent 1996; 9(3): 93-5.
5
Brecx M, Brownstone E, MacDonald L, Gelskey S, Cheang M. Efficacy of Listerine, Meridol and chlorhexidine mouthrinses as supplements to regular tooth cleaning measures. J Clin Periodontol 1992; 19(3): 202-7.
6
Esfahanian V, Ketabi M, Farman Ara H. Efficacy of Chlorhexidine and Irsha (anti-plaque) mouthrinses on reducing dental plaques. Journal of Isfahan Dental School 2007; 3(1): 10-4. (Persian)
7
Newman MG, Takei H, Klokkevold PR, Corranza FA. Corranza's Clinical Periodontology. Trans by: Soleimani Shayesteh Y, Khorsand A. 1st ed. Tehran: Shayan Nemoodar; 2002. P. 66-7, 70, 85, 649.
8
Quirynen M, Soers C, Desnyder M, Dekeyser C, Pauwels M, van Steenberg D. A 0.05% cetyl pyridinium chloride /0.05% chlorhexidine mouthrinse during maintenance phase after initial periodontal therapy. J Clin Periodontol 2005; 32(4): 390-400.
9
Salehi P, Momeni Danaie Sh. Comparison of the antibacterial effects of persica mouthwash with chlorhexidine on streptococcus mutans in orthodontic patients. DARU 2006; 14(4): 178-82.
10
Kulkarni VV, Damle SG. Comparative evaluation of efficacy of sodium fluoride, chlorhexidine and triclosan mouthrinses in reducing the mutans streptococci count in saliva: An in vivo study. J Indian Soc Pedod Prev Dent 2003; 21(3): 98-104.
11
Kaneko N, Yoshihara A, Ida H, Nomura Y, Imai S, Nisizawa T, et al. Influence of a fluoride mouthrinse on mutans streptococci in school children. Caries Res 2006; 40(6): 501-7.
12
Yoshihara A, Sakuma S, Kobayashi S, Miyazaki H. Antimicrobial effect of fluoride mouthrinse on mutans streptococci and lactobacilli in saliva. Pediatr Dent 2001; 23(2): 113-7.
13
Zameck RL, Tinanoff N. Effects of NaF and SnF2 on growth, acid and glucan production of several oral streptococci. Arch Oral Biol 1987; 32(11): 807-10.
14
Waly NG. Assessment of salivary lactobacillus and Streptococcus mutans counts following sodium fluoride mouthrinsing in Egyptian children. Egypt Dent J 1995; 41(2): 1179-88.
15
Zanela NL, Bijella MF, Rosa OP. The influence of mouthrinses with antimicrobial solutions on the inhibition of dental plaque and on the levels of mutans streptococci in children. Pesqui Odontol Bras 2002; 16(2): 101-6.
16
Kocak MM, Ozcan S, Kocak S, Topuz O, Erten H. Comparison of the efficacy of three different mouthrinse solutions in decreasing the level of streptococcus mutans in saliva. Eur J Dent 2009; 3(1): 57-61.
17
Kasuga Y, Ikenoya H, Okuda K. Bactericidal effects of mouthrinses on oral bacteria. Bull Tokyo Dent Coll 1997; 38(4): 297-302.
18
Shirzad S, Moghadas H. Evaluation of clinical effects of Irsha mouthwash on microbial plaque and gingival inflammation in gingivitis patients after supragingival scaling. [Doctorate Thesis]. Iran. Dental School of Shahid Beheshti University of Medical Sciences; 2000. (Persian)
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر ضدباکتریال غلظتهای مختلف عصاره گیاه مورد بر برخی از باکتریهای حفره دهان در شرایط آزمایشگاهی
مقدمه: میکروارگانسیمها از جمله عوامل اصلی بیماریهای پریودنتال و پوسیدگی دندانی میباشند. در سالهای اخیر، استفاده از گیاهان داروئی به عنوان درمان کمکی در کنار حذف عوامل باکتریال به روش مکانیکی در نظر گرفته شده است. از این رو، هدف از انجام این مطالعه بررسی ضد باکتریال عصاره گیاه مورد بر روی باکتریهای شایع موجود در دهان بود.
مواد و روشها: این مطالعه آزمایشگاهی بر روی 9 سوش باکتری انجام شد. هر سوش در محیطهای آگار خوندار و Mular Hintone کشت داده شد. دیسکهای کاغذی به قطر mm6 آغشته به عصاره گیاه مورد با 4 غلظت مختلف بر روی محیط کشت هر یک از باکتریها قرار داده شدند و بعد از 24 ساعت قطر هاله عدم رشد اندازه گیری شد. نتایج به دست آمده با استفاده از آزمونهای آماری ANOVA و Tukey HSD مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند.
یافتهها: نتایج این مطالعه نشان داد که قطر هاله عدم رشد برای باکتریهای استرپتوکوکوس سالیواریس و استافیلوکوکوس اپیدرمیس در غلظتهای مختلف عصاره گیاه مورد از نظر آماری تفاوت معنیداری نداشت. بزرگترین قطر هاله عدم رشد برای استرپتوکوکوس سانگوئیس، استرپتوکوکوس موتانس و دیفتروئید، در غلظت 5/2% و برای لاکتوباسیل در غلظت 1% و برای استافیلوکوکوس آرئوس در غلظتهای 1% و 5/2% و برای سودوموناس آئروژنوزا در غلظت 5/2% مشاهده گردید و کمترین قطر هاله عدم رشد مربوط بهلاکتوباسیل در غلظت 5% بود. بیشترین حساسیت به عصاره گیاه مورد در غلظت 5/2% و کمترین حساسیت در غلظتهای 5/0% و 5% مشاهده شد.
نتیجه گیری: عصاره مورد با غلظتهای مختلف دارای اثرات متفاوت برروی باکتریهای تحت مطالعه بود. بیشترین اثربخشی عصاره گیاه مورد بر باکتریهای سودوموناس آئروژینوزا در غلظت 5/2% با قطر هاله عدم رشد حدود 16 میلیمتر و همچنین کمترین اثربخشی عصاره گیاه مورد در غلظت 5% بر لاکتوباسیل با قطر هاله عدم رشد حدود 6 میلیمتر بوده است.
https://jmds.mums.ac.ir/article_970_710b9dbd4f9f7030b30e64066933696f.pdf
2011-06-22
123
130
10.22038/jmds.2011.970
گیاه مورد
باکتریهای هوازی-بی هوازی
عصاره گیاهی
بهزاد
هوشمند
1
دانشیار گروه پریودانتیکس، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی
AUTHOR
حامد
مرتضوی
mortazavi57@yahoo.com
2
استادیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی
AUTHOR
یوسف
علیخانی
3
استادیار گروه میکروبیولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی همدان
AUTHOR
حمیدرضا
عبدالصمدی
abdolsamadi@umsha.ac.ir
4
دانشیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت ، مرکز تحقیقات دندانپزشکی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی همدان
LEAD_AUTHOR
فاطمه
احمدی متمایل
fatahmadim@yahoo.com, f.ahmadi@umsha.ac.ir
5
استادیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، مرکز تحقیقات پزشکی مولکولی، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی همدان
AUTHOR
رضا
زارع محمودآبادی
zaremr@mums.ac.ir
6
استادیار گروه آسیب شناسی دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد
AUTHOR
Yadegarinia D, Gachkar L, Rezaei MB, Taghizadeh M, Astaneh SA, Rasooli I. Biochemical activities of Iranian Mentha piperita L. and Myrtus communis L. essential oils. Phytochemistry 2006; 67(12): 1249-55.
1
Romani A, Coinu R, Carta S, Pinelli P, Galardi C, Vincieri FF, et al. Evaluation of antioxidant effect of different extract of Myrtus communis L. Free Radic Res 2004; 38(1): 97-103.
2
Hines T, Hill T. Encyclopedia of medicinal plants. 15th ed. London: Dorsley Kinderseley; 1996. P. 2360.
3
Hayder N, Abdewahed A, Kilani S, Ammar RB, Mahmoud A, Ghedira K, et al. Anti-genotoxic and free-radical scavenging activities of extracts from (Tunisian) Myrtus communis. Mutat Res 2004; 564(1): 89-95.
4
Feisst C, Franke L, Appendino G, Werz O. Identification of molecular targets of the oligomeric nonprenylated acylphlorolucinols from Myrtus communis and their implication as anti-inflammatory compounds. J Pharmacol Exp Ther 2005; 315(1): 389-96.
5
Domaracky M, Rehak P, Juhas S, Koppel J. Effects of selected plant essential oils on the growth and development of mouse preimplantation embryos in vitro. Physiol Res 2007; 56(1): 97-104.
6
Burt SA, Reinders RD, Antibacterial activity of selected plant essential oils against Escherichia coli O157: H7. Lett Appl Microbial 2003; 36(3): 162-6.
7
Jorgensen MG, Solts J. Practical antimicrobial periodontal therapy. Compend Contin Educ Dent 2000; 21(2): 111-4, 116, 118-20.
8
Proestos C, Chorianopoulos N, Nychas GJ, Komaitis M. RP-HPLC analysis of the phenolic compounds of plant extracts. Investigation of their antioxidant capacity and antimicrobial activity. J Agric Food Chem 2005; 53(4): 1190-5.
9
Rotstein A, Lifshitz A, Kashman Y. Isolation and antibacterial activity of acylphloroglucinols from Myrtus communis. Antimicrob Agents Chemother 1974; 6(5): 539-42.
10
Aridogan BC, Baydar H, Kava S, Demirci M, Ozbasar D, Mumcu E. Antimicrobial activity and chemical composition of some essential Oils. Arch Pharm Res 2002; 25(6): 860-4.
11
Dip EC, Pereira NA, Fernandes PD. Ability of eugenol to reduce tongue edema induced by Dieffenbachia picta Schott in mice. Toxicon 2004; 43(6): 729-35.
12
Burits M, Bucar F. Antioxidant activity of Nigella sativa essential oli. Phytother Res 2000; 14(5): 323-8.
13
Montoro P, Braca A, Pizza C, De Tommasi N. Structure antioxidant activity relationships of flavonoids isolated from different plants species. Food Chemistry 2005; 92: 349-55.
14
Kilani S, Abdelwahed A, Chraief I, Ben Ammar R, Hayder N, Hammami M, et al. Chemical Composition, antibacterial and anti mutagenic activities of essential oil from (Tunisian) Cyperus rotundus. J Essent Oil Res 2005; 17(6): 695-700.
15
AL-Saimary IE, Bakr SS, Jaffar T, Al-Saimary AE, Salim H, Al-Muosawi R. Effects of some plant extracts and antibiotics on pseudomonas aeruginosa isolated from various burn cases. Saudi Med J 2002; 23(7): 802-5.
16
Moleyar V, Narasimham P. Antibacterial activity of essential oil components. Int J Food Microbiol 1992; 16(4): 337-42.
17
ORIGINAL_ARTICLE
میزان دسترسی به داروها و تجهیزات اورژانس ضروری در مطبهای دندانپزشکی در چهار شهر جنوبی ایران (87-1386)
مقدمه: وقوع حوادث اورژانس در مطبهای دندانپزشکی مسئلهای انکارناپذیر میباشد و باید برای مقابله با آن آمادگی علمی و عملی کافی را کسب نمود. هدف از انجام این تحقیق بررسی وضعیت دارویی و تجهیزاتی مطبهای دندانپزشکی چهار شهر جنوبی ایران جهت مقابله با چنین وقایعی میباشد.
مواد و روشها: این مطالعه توصیفی، با استفاده از چک لیست در کل جامعه آماری دندانپزشکان چهار شهر جنوبی کشور در سال 87-1386 انجام شد. روش جمعآوری اطلاعات شامل مراجعه به مطبها، مصاحبه با دندانپزشکان و مشاهده کیت اورژانس و تکمیل فرم اطلاعاتی توسط کارشناسان آموزشدیده بود. دادهها با آزمونهای پارامتریک t-test و تست های غیرپارامتریک Chi-Square و Fisher’s Exact آنالیز شد.
یافتهها: در مجموع از بین 126 مطب، 117 مورد در مطالعه شرکت کردند، بنابراین میزان پاسخدهی در مطالعه 9/92% بود. نتایج نشان داد که میانگین سنی دندانپزشکان 6/7±36 سال، میانگین زمان فارغالتحصیلی افراد 2/7±4/8 سال و میانگین مدت تاسیس مطب آنها 9/6±6/6 سال بود. 53% از افراد دوره فوریتهای پزشکی را گذرانده و 3/39% از دندانپزشکان دارای کیت اورژانس بودند، که البته تمامی کیتهای موجود نیز ناقص بودند.
نتیجه گیری:با توجه به عدم وجود کیت اورژانس در بسیاری از موارد و ناقص بودن تمامی کیتهای موجود بر ضرورت برگزاری دوره فوریتهای پزشکی برای دندانپزشکان و ارائه واحد درسی مربوطه برای دانشجویان دندانپزشکی تاکید میگردد.
https://jmds.mums.ac.ir/article_971_800f1d00749ce847e4b1eb4e865b0e85.pdf
2011-06-22
131
140
10.22038/jmds.2011.971
داروهای اورژانس
تجهیزات اورژانس
دندانپزشکی
شهرهای جنوبی ایران
محمد مهدی
یاقوتی خراسانی
m.yaghooti@yahoo.com
1
استادیار گروه اندودانتیکس دانشکده دندانپزشکی دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
LEAD_AUTHOR
رضا
وزیری نژاد
2
دانشیار گروه پزشکی اجتماعی دانشکده پزشکی دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان
AUTHOR
Hupp RJ‚ Ellis E, Myron RT. Oral and Maxillofacial Surgery. 5th ed. St. Louis: Mosby Co; 2008. P. 21-8.
1
Atherton GJ, McCaul JA, Williams SA. Medical emergencies in general dental practice in Great Britain. Part 1: Their prevalence over a 10-year period. Br Dent J 1999; 186(2): 72–9.
2
Atherton GJ, McCaul JA, Williams SA. Medical emergencies in general dental practice in Great Britain. Part 2: Drugs and equipment possessed by GDPs and used in the management of emergencies. Br Dent J 1999; 186(3): 125-30.
3
Chapman PJ. Medical emergencies in dental practice and choice of emergency drugs and equipment: A survey of Australian dentists. Aust Dent J 1997; 42(2): 103-8.
4
Kandray DP, Pieren JA, Benner RW. Attitudes of Ohio dentists and dental hygienists on the use of automated external defibrillators. J Dent Educ 2007; 71(4): 480-6.
5
Gonzaga HF, Buso L, Jorge MA, Gonzaga LH, Chaves MD, Almeida OP. Evaluation of knowledge and experience of dentists of São Paulo State, Brazil about cardiopulmonary resuscitation. Braz Dent J 2003; 14(3):
6
Malamed SF. Emergency medicine in pediatric dentistry: Preparation and management. J Calif Dent Assoc 2003; 31(10): 749-55.
7
Matsuura H. Analysis of systemic complications and deaths during dental treatment in Japan. Anesth Prog 1989; 36(4-5): 223-5.
8
Nunn P. Medical emergencies in the oral health care setting. J Dent Hyg 2000; 74(3): 238-9.
9
Peskin RM, Siegelman LI. Emergency cardiac care. Moral, legal, and ethical considerations. Dent Clin North Am 1995; 39(3): 677-88.
10
Kaeppler G, Daublander M, Hinkelbein R, Lipp M. Quality of cardiopulmonary resuscitation by dentists in dental emergency care. Mund Kiefer Gesichtschir 1998; 2(2): 71-7.
11
Chapman PJ. A questionnaire survey of dentists regarding knowledge and perceived competence in resuscitation and occurrence of resuscitation emergencies. Aust Dent J 1995; 40(2): 98-103.
12
Atherton GJ, McCaul JA, Williams SA. Medical emergencies in general dental practice in Great Britain. Part 3: Perceptions of training and competence of GDPs in their management. Br Dent J 1999; 186(5): 234-7.
13
Girdler NM, Smith DG. Prevalence of emergency events in British dental practice and emergency management skills of British dentists. Resuscitation 1999; 41(2): 159-67.
14
Jordan T, Bradley P. A survey of basic life support training in various undergraduate health care professions. Resuscitation 2000; 47(3): 321-3.
15
Gasco C, Avellanal N, Sanchez M. Cardiopulmonary resuscitation training for students of odontology: Skills acquisition after two periods of learning. Resuscitation 2000; 45(3): 189-94.
16
Mutzbauer TS, Rossi R, Ahnefeld FW, Sitzmann F. Emergency medical training for dental students. Anesth Prog 1996; 43(2): 37-40.
17
Clark MS, Wall BE, Tholström TC, Christensen EH, Payne BC. A twenty-year follow-up survey of medical emergency education in U.S. dental schools. J Dent Educ 2006; 70(12): 1316-9.
18
Broadbent JM, Thomson WM. The readiness of New Zealand general dental practitioners for medical emergencies. N Z Dent J 2001; 97(429): 82-6.
19
Kieser J, Herbison P. Clinical anxieties among dental students. N Z Dent J 2000; 96(426): 138-9.
20
Malamed SF. Medical Emergencies in the Dental Office. 6th ed. St. Louis: Mosby Co; 2007. P. 59-100.
21
Dym H. Preparing the dental office for medical emergencies. Dent Clin North Am 2008; 52(3): 605-8.
22
Behnia H‚ Reshad M. A survey of knowledge‚attitude and practice of dentists in encountering medical emergencies. Journal of Dental School‚ Shahid Beheshti University of Medical Sciences 1999; 17(3): 159-67. (Persian)
23
Farhad Mollashahi L‚Honarmand M. Assessment of knowledge and attitude of general dental practitioners about medical emergencies in Zahedan-Iran. J Mash Dent Sch 2009; 32(4): 319-24. (Persian)
24
Mesgar Zadeh AH‚ Dabbaghi Tabrizi F. Prevalence of emergency events and the kinds of drugs & emergency equipment in Tabriz dental offices in 1381. Journal of Dental School‚ Shahid Beheshti University of Medical Sciences 2005; 3(4): 484-93. (Persian)
25
Bayat M‚ Malkamian L‚ Baheri F. Evaluation of emergency equipment and drugs in Karaj urban dental clinics and ability of dentists to use them. J Islamic Dent Assoc 2005; 17(2): 105-10. (Persian)
26
ORIGINAL_ARTICLE
گزارش یک مورد لنفوم غیرهوجکین در استخوان فک پایین
مقدمه: بروز لنفوم بدخیم در دهان نادر بوده و حدود 5/3% از بدخیمیهای دهانی را شامل میشود. لنفوم بدخیم بیشتر در بالغین دیده شده است، ولی انواع شدید و متوسط در کودکان هم دیده میشود. بیماری بیشتر در گرههای لنفاوی شروع میشود ولی نوع اکسترانودال هم دیده شده است (در اطفال فرم اکسترانودال شایعتر از نودال است). تـظاهر بیماری به صورت توده غیرحساس با سیری در طی ماهها که بـیشتر در
گردن، زیربغل و کشاله ران دیده میشود. لنفوم در حفره دهان به صورت اکسترانودال، در بافت نرم یا در استخوان ایجاد میشود. تظاهرات بافت نرم به شکل تورم منتشر غیرحساس در وستیبول باکال، خلف کام سخت یا لثه است. بیمار ممکن است از اختلال حس و سندرم چانه بیحس به ویژه در ضایعات فک پایین شکایت داشته باشد.
گزارش مورد: یک پسر 8 ساله با شکایت از لقی دندانهای دائمی برای 15 روز به بخش بیماریهای دهان دانشکده دندانپزشکی مشهد مراجعه کرد. بیمار همجنین تاریخچهای از پارستزی لب پایین در 1 ماه گذشته و فلج عصب صورتی سمت چپ که از 7 روز قبل ایجاد شده بود، میداد. همزمان بیمار دچار بیحالی، بیاشتهایی، درد استخوانی و لنفادنوپاتی (سر و گردن) علائم شبه آنفلوانزا، خستگی و لکوسیتوز بود. با تشخیص کلینیکی لوسمی بیمار به متخصص خون کودکان ارجاع شد. تشخیص نهایی لنفوم غیرهوجکین با نمونه برداری گره لنفاوی مشخص گردید.
نتیجه گیری: دندانپزشکان نقش مهمی در تشخیص اولیه لنفوم دهان دارند. لنفوم غیرهوجکین در سر و گردن معمولاً به صورت یک تورم بدون درد غده لنفاوی بروز مییابد ولی تظاهرات دیگری هم وجود دارد که میتواند مشکلات تشخیصی زیادی ایجاد کند که منجر به تاخیر تشخیص و شروع درمان مناسب میشود.
https://jmds.mums.ac.ir/article_972_1b389d90fd0bf0ed24c727c4a224ad0d.pdf
2011-06-22
141
146
10.22038/jmds.2011.972
لنفوم غیرهوجکین
لنفادنوپاتی
لقی دندان
فلج عصب صورتی
عباس
جوادزاده بلوری
abbas_javadzadeh@yahoo.com
1
دانشیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد
AUTHOR
آتس سا
پاک فطرت
pakfetrata@mums.ac.ir
2
دانشیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد
AUTHOR
پگاه
مسنن مظفری
mosannenp@mums.ac.ir
3
استادیار گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد
AUTHOR
ارغوان
تنکابنی
a.tonkaboni@yahoo.com
4
دستیار تخصصی گروه بیماریهای دهان، فک و صورت، دانشکده دندانپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد
LEAD_AUTHOR
Gabrić PD, Kuna T, Katanec D. Pain after tooth extraction masking primary extranodal non-hodgkin's lymphoma of the oral cavity. Acta Stomatol Croat 2007; 41(4): 366-74.
1
Pazoki A, Jansisyanont P, Ord RA. Primary non-Hodgkin's lymphoma of the jaws: Report of 4 cases and review of the literature. J Oral Maxillofac Surg 2003; 61(1): 112-7.
2
Lopez-Jornet P, Bermejo-Fenoll A. Oral mucosal non-Hodgkin's lymphoma. Oral Oncol Extra 2005; 41(6): 101-3.
3
Adouani A, Bouguila J, Jeblaoui Y, Ben Aicha M, Abdelali M A, Hellali M, et al. B-Cell Lymphoma of the Mandible: A Case Report. Clinical Medicine: Oncology 2008; 2: 445-50.
4
Piatelli A, Croce A, Tete S, Artese L. Primary non-Hodgkin’s lymphoma of the mandible: A case report. J Oral MaxillofacSurg1997; 55(10): 1162-6.
5
Gusenbauer AW, Katsikeris NF, Brown A. Primary lymphoma of the mandible: Report of a case. J Oral Maxillofac Surg 1990; 48(4): 409-15.
6
Angiero F, Stefani M, Crippa R. Primary non-Hodgkin’s lymphoma of the mandibular gingiva with maxillary gingival recurrence. Oral Oncology Extra 2006: 42(3): 123-8.
7
Corti M, Solari R, Cangelosi D, De Carolis L, Schtirbu R, Lewi D. Oral cavity lymphoma as secondary AIDS-defining neoplasm in a patient on HAART with immune reconstitution. Rev Soc Bras Med Trop 2007; 40(5): 582-4.
8
Jones JR, Swaroop VS. 58-year-old woman with dry mouth and swollen parotid glands.Mayo Clin Proc 2003; 78(9): 1145-8.
9
Buchanan JA, Hasan AS, Churchill L, Fortune F. Atypical palatal ulceration. Postgrad Med J 1995; 71(831): 55-6.
10
Kirita T, Ohgi K, Shimooka H, Okamoto M, Yamanaka Y, Sugimura M. Primary non-Hodgkin’slymphoma of the mandible treated with radiotherapy, chemotherapy,and autologous peripheral blood stem cell transplantation. Oral SurgOral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2000; 90(4): 450-5.
11
MacPhail LA, Greenspan D, Feigal DW, Lennette ET, Greenspan JS. Recurrent aphthous ulcers in association with HIV infection. Description of ulcer types and analysis of T-lymphocyte subsets. Oral Surg Oral Med Oral Pathol 1991; 71(6): 678-83.
12
Venkatesh E, Bagewadi A, Keluskar V, Shetti A. Oral non-Hodgkin's lymphoma as an initial diagnosis in a HIV positive patient. J Indian Acad Oral Med Radiol 2008; 20(4): 162-5.
13
Freitas Rde A, Veras Barros SS, Quinderé LB. Oral Burkitt's lymphoma--case report. Braz J Otorhinolaryngol 2008; 74(3): 458-61.
14
Patil K, Mahima VG, Jayanth BS, Ambika L. Burkitt's lymphoma in an Indian girl: A case report. J Indian Soc Pedod Prev Dent 2007; 25(4): 194-9.
15
Schattner A, Kozack N,Sandler A, Shtalrid M. Facial diplegia as the presenting manifestation of acute lymphoblastic leukemia. Mt Sinai J Med 2001; 68(6): 406-9.
16
Cox DP, Treseler P, Dong R, Jordan RC. Rare oral cavity presentation of a B-cell lymphoblastic lymphoma. A case report and review of the literature. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod 2007; 103(6):
17
Barbieri E, Cammelli S, Mauro F, Perini F, Cazzola A, Neri S, et al. Primary non-Hhodgkin’s lymphoma of the bone: Treatment and analysis of prognostic factors for stage I and stage II. Int J Radiat Oncol Biol Phys 2004; 59(3):760-4.
18